Las formas clásicas BCR::ABL1 negativas son, ante todo, la policitemia vera (PV), la trombocitemia esencial (ET) y la mielofibrosis primaria (PMF). La mayoría se diagnostica en adultos mayores de 60 años. Como regla general se encuentra una médula ósea hipercelular con expansión de una o más líneas mieloides y, según la entidad, eritrocitosis, granulocitosis y/o trombocitosis en sangre periférica.
La OMS 2022 reporta incidencias aproximadas de 1.57 por 100,000 personas-año para la PV, 1.55 por 100,000 para la ET y 0.44–1.5 por 100,000 para la PMF en fase fibrótica.
Panel diagnóstico
| Estudio | Muestra / anticoagulante | Prioridad en la fuente |
|---|---|---|
| Citomorfología | EDTA | Esencial |
| Inmunofenotipo | EDTA o heparina | Según contexto |
| Análisis cromosómico | Heparina | Esencial |
| FISH | EDTA o heparina | Según contexto |
| Genética molecular | EDTA | Esencial |
Clasificación
MPN según la OMS 2022
| Entidad | Estado de BCR::ABL1 |
|---|---|
| Leucemia mieloide crónica (LMC) | BCR::ABL1 positiva |
| Policitemia vera (PV) | BCR::ABL1 negativa |
| Trombocitemia esencial (ET) | BCR::ABL1 negativa |
| Mielofibrosis primaria (PMF) | BCR::ABL1 negativa |
| Leucemia neutrofílica crónica (CNL) | BCR::ABL1 negativa |
| Leucemia eosinofílica crónica (CEL) | BCR::ABL1 negativa |
| Leucemia mielomonocítica juvenil (JMML) | BCR::ABL1 negativa |
| Neoplasia mieloproliferativa, no especificada (NOS) | Variable según contexto diagnóstico |
Detectar o descartar BCR::ABL1 es un punto crítico para distinguir la LMC de las MPN BCR::ABL1 negativas.
Métodos diagnósticos y su utilidad
Citomorfología e histología
En la evaluación morfológica hay que revisar:
- la celularidad global de la médula ósea;
- la expansión de las distintas líneas hematopoyéticas;
- la morfología de los megacariocitos;
- el porcentaje de blastos en sangre y en médula;
- los datos de progresión o transformación.
Cuando hay fibrosis importante, como en la PMF, el aspirado puede ser escaso o no obtenerse (punctio sicca), lo que limita la citomorfología.
La biopsia de médula ósea con estudio histológico es esencial para valorar la arquitectura medular y el grado de fibrosis; debe formar parte del abordaje cuando se sospecha o ya se estableció una MPN.
Citogenética
Las alteraciones cromosómicas son heterogéneas. Se identifican con mayor frecuencia en la PMF —aproximadamente 45%— y en la PV —alrededor de 20%—, mientras que en la ET son menos frecuentes, por lo general <10% (WHO 2022; Gangat et al. 2022).
Alteraciones citogenéticas recurrentes en MPN BCR::ABL1 negativas
| Alteración | PMF | PV | ET |
|---|---|---|---|
| +1q | + | + | — |
| +8 | + | + | + |
| +9 | + | + | + |
| -5 | + | — | — |
| del(5q) | + | + | + |
| -7 | + | + | — |
| del(7q) | + | + | — |
| del(11q) | + | — | — |
| del(12p) | + | + | — |
| del(13q) | + | + | + |
| del(20q) | + | + | + |
| i(17q) | + | — | — |
(Reilly 2008; Tang et al. 2017; Gangat et al. 2022; WHO 2022; Tefferi 2023).
FISH
En el estudio de las MPN, FISH es sobre todo un método complementario y dirigido. Su uso más importante aquí es ayudar a descartar un rearreglo BCR::ABL1 cuando se sospecha una MPN BCR::ABL1 negativa.
Que el cariotipo no muestre la translocación Philadelphia no descarta por completo una LMC, porque existen rearreglos BCR::ABL1 crípticos. Por eso, ante sospecha clínica y morfológica hay que usar FISH y/o PCR para descartar BCR::ABL1 de manera confiable.
Un panel FISH limitado en núcleos en interfase sólo detectaría una parte de las alteraciones posibles en las MPN y no sustituye al cariotipo convencional.
Genética molecular
La genética molecular ocupa un lugar central en el diagnóstico actual. Sus objetivos son:
- descartar BCR::ABL1;
- documentar la clonalidad;
- distinguir una MPN de cambios reactivos;
- identificar las mutaciones conductoras;
- aportar información pronóstica y, en algunas situaciones, de seguimiento.
Las mutaciones conductoras principales en las MPN clásicas son JAK2, CALR y MPL.
Frecuencia aproximada de mutaciones en PV, ET y PMF
| Gen | PMF (%) | PV (%) | ET (%) |
|---|---|---|---|
| JAK2 | 60 | 98 | 55 |
| MPL | 7–10 | 0 | 5–7 |
| CALR | 20–30 | 0 | 25–30 |
| TET2 | 10–20 | 10–20 | 3–10 |
| DNMT3A | 8–12 | 5–10 | 1–5 |
| IDH1/2 | 5–6 | 1–2 | 1–2 |
| ASXL1 | 15–35 | 2–7 | 5–10 |
| EZH2 | 7–10 | 1–2 | 1–2 |
| NRAS | 2–4 | <2 | <2 |
| KRAS | 2 | <2 | <2 |
| SH2B3 | 2–4 | 2–9 | 1–3 |
| CBL | 4 | <2 | <2 |
| SRSF2 | 6–14 | <2 | <2 |
| SF3B1 | 5–7 | 2–3 | 2–5 |
| U2AF1 | 7–10 | <2 | <2 |
| NFE2 | 3–5 | 3–6 | 1–7 |
| RUNX1 | 2–3 | <2 | <2 |
| TP53 | 4–5 | <2 | <2 |
(Luque Paz et al. 2023).
En casos familiares —sobre todo en pacientes muy jóvenes con estudio habitual negativo y antecedentes familiares positivos— vale la pena buscar alteraciones germinales poco frecuentes en VHL, EPOR, EPAS1 o EGLN1 (Jones & Cross 2013; Rumi & Cazzola 2017; McMullin 2019).
Pronóstico
Junto con los factores clínicos clásicos —edad avanzada, leucocitosis y antecedente de trombosis—, las alteraciones citogenéticas y moleculares tienen un papel cada vez mayor en la estratificación pronóstica de las MPN BCR::ABL1 negativas.
JAK2 V617F es la mutación más frecuente: está presente en casi todos los casos de PV y en una proporción importante de ET y PMF. CALR y MPL son conductores frecuentes en ET y PMF. Sin embargo, como estas mutaciones se comparten entre entidades, su presencia por sí sola no establece el diagnóstico específico.
Además de las mutaciones conductoras, en una proporción importante de pacientes se encuentran alteraciones adicionales: aproximadamente 81% en la PMF y 53% en la PV y la ET en las series citadas. Mutaciones como la de IDH2 se han asociado con mayor riesgo en las tres MPN clásicas, y cada entidad tiene además perfiles moleculares pronósticos propios.
El pronóstico se interpreta según la entidad específica —PV, ET, PMF, CNL o CEL— con los sistemas de riesgo clínico-moleculares que le corresponden.
Última actualización de la fuente: octubre de 2025.
Referencias
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- Gangat N et al. Cytogenetic abnormalities in essential thrombocythemia: Clinical and molecular correlates and prognostic relevance in 809 informative cases. Blood Cancer J 2022;12(3):44.
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- Grinfeld, J., et al. Classification and Personalized Prognosis in Myeloproliferative Neoplasms. NEJM 2018;379(15):1416–1430.
- Jones AV, Cross NC. Inherited predisposition to myeloproliferative neoplasms. Ther Adv Hematol 2013;4(4):237-253.
- Luque Paz D et al. Genetic basis and molecular profiling in myeloproliferative neoplasms. Blood 2023;141(16):1909-1921.
- McMullin MF. Diagnostic workflow for hereditary erythrocytosis and thrombocytosis. Hematology Am Soc Hematol Educ Program 2019;2019(1):391-396.
- Reilly JT. Pathogenetic insight and prognostic information from standard and molecular cytogenetic studies in the BCR-ABL-negative myeloproliferative neoplasms (MPNs). Leukemia 2008;22(10):1818-1827.
- Rumi E, Cazzola M. Advances in understanding the pathogenesis of familial myeloproliferative neoplasms. Br J Haematol 2017;178(5):689-698.
- Tang G et al. Characteristics and clinical significance of cytogenetic abnormalities in polycythemia vera. Haematologica 2017;102(9):1511-1518.
- Tashkandi H, Younes IE. Advances in Molecular Understanding of Polycythemia Vera, Essential Thrombocythemia, and Primary Myelofibrosis: Towards Precision Medicine. Cancers (Basel) 2024;16(9):1679.
- Tefferi A. Primary myelofibrosis: 2023 update on diagnosis, risk-stratification, and management. Am J Hematol 2023;98(5):801-821.
- Tefferi A et al. Targeted deep sequencing in polycythemia vera and essential thrombocythemia. Blood Adv 2016;1(1):21-30.
- Tefferi A, Vannucchi AM. Genetic Risk Assessment in Myeloproliferative Neoplasms. Mayo Clin Proc 2017;92(8):1283-1290.
- WHO Classification of Tumours Editorial Board. Haematolymphoid tumours [Internet]. Lyon (France): International Agency for Research on Cancer; 2022. (WHO classification of tumours series, 5th ed.; vol. 11). Available from: https://tumourclassification.iarc.who.int/chapters/63 .