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Neoplasias hematológicas en pacientes con anemia de Fanconi (AF)

Aliases / nomenclatura: FA · AF · Fanconi anemia · anemia de Fanconi · MDS in Fanconi anemia · AML in Fanconi anemia

La anemia de Fanconi (AF) es un síndrome hereditario de inestabilidad cromosómica que se debe a variantes germinales de la vía de reparación FA/BRCA. Cursa con falla medular, anomalías del desarrollo y una marcada predisposición a neoplasias, en particular neoplasias mielodisplásicas (MDS) y leucemia mieloide aguda (LMA).

En estos pacientes, la evaluación hematológica se plantea de manera distinta a la de las MDS/LMA esporádicas, tanto por el patrón genético característico como por la gran sensibilidad a los agentes que dañan el DNA.

Panel diagnóstico

EstudioMuestra / anticoagulantePrioridad según la fuente
CitomorfologíaEDTAEsencial
InmunofenotipoEDTA o heparinaEsencial en LMA; según contexto en MDS
Análisis cromosómicoHeparinaEsencial
FISHEDTA o heparinaSegún contexto
Genética molecularEDTASegún contexto

Bases biológicas de la anemia de Fanconi

La AF es heterogénea tanto en la clínica como en la genética. La disfunción de la vía FA/BRCA produce fragilidad cromosómica e hipersensibilidad a los agentes que generan enlaces cruzados en el DNA. Son características las anomalías del desarrollo, la falla medular de inicio temprano, los trastornos endocrinos y la predisposición a cáncer.

Es una de las causas hereditarias más importantes de insuficiencia medular. Las citopenias casi siempre empiezan en la infancia, con trombocitopenia y leucopenia, y pueden avanzar hasta la pancitopenia. Se han identificado variantes patogénicas en más de 20 genes de la vía de Fanconi.

En las series citadas, el riesgo acumulado de falla medular hacia los 40 años va de alrededor de 50 a 90%. A esa misma edad, el riesgo acumulado de MDS se acerca a 30% y el de LMA a 10%; de ahí la recomendación de una vigilancia hematológica estrecha con estudios periódicos de médula ósea.

Diagnóstico de la anemia de Fanconi

La prueba clásica es el ensayo de fragilidad cromosómica con agentes entrecruzantes: las células de los pacientes con AF muestran un número aumentado de rupturas cromosómicas. Otra opción es analizar el ciclo celular después de exponer las células a mitomicina C, donde se observa acumulación en la fase G2.

El estudio genético en DNA constitucional identifica variantes patogénicas o deleciones en los genes FANC y define el subtipo molecular. Algunos genotipos, como FANCD1/BRCA2 y FANCN/PALB2, se asocian con fenotipos especialmente graves y con neoplasias de aparición temprana.

En una fracción de las células sanguíneas puede ocurrir reversión somática, que genera mosaicismo y resultados falsamente tranquilizadores cuando la prueba se hace sólo en sangre. En ese escenario puede ser necesario realizar el ensayo de fragilidad cromosómica en fibroblastos de piel.

Ilustración conceptual en tres momentos. A la izquierda, un fragmento de doble hélice de DNA con un enlace cruzado que une ambas cadenas, marcado como la lesión central. En el centro, la vía de reparación FA/BRCA representada como un proceso que no se completa. A la derecha, cromosomas esquemáticos con rupturas del trazo. Debajo, tres consecuencias: fragilidad cromosómica con aumento de rupturas, hipersensibilidad a los agentes que generan enlaces cruzados en el DNA y toxicidad que obliga a esquemas de acondicionamiento de intensidad reducida.
Un solo mecanismo explica tres cosas distintas en la anemia de Fanconi. La disfunción de la vía FA/BRCA impide resolver los enlaces cruzados del DNA, y de ahí derivan la fragilidad cromosómica, la hipersensibilidad que aprovecha el ensayo diagnóstico y la toxicidad que obliga a reducir la intensidad del acondicionamiento. Ilustración conceptual: los cromosomas son esquemáticos y no representan una metafase real.
Algoritmo descendente del diagnóstico de anemia de Fanconi. Entrada por sospecha clínica, con citopenias que suelen empezar en la infancia y pueden llegar a pancitopenia. Dos pruebas equivalentes: ensayo de fragilidad cromosómica con agentes entrecruzantes, con aumento de rupturas cromosómicas, y análisis del ciclo celular tras mitomicina C, con acumulación en fase G2. Después, estudio genético en DNA constitucional que identifica variantes o deleciones en genes FANC y define el subtipo molecular, señalando que FANCD1 BRCA2 y FANCN PALB2 se asocian con fenotipos graves y neoplasias tempranas. Una rama separada advierte que la reversión somática en células sanguíneas genera mosaicismo y resultados falsamente tranquilizadores, y termina indicando el ensayo de fragilidad cromosómica en fibroblastos de piel.
Ruta diagnóstica de la anemia de Fanconi. El ensayo de fragilidad cromosómica con agentes entrecruzantes y el análisis del ciclo celular tras mitomicina C son alternativas, no pasos sucesivos, y el estudio genético en DNA constitucional define el subtipo. La excepción es lo que importa recordar: la reversión somática en células sanguíneas puede dar un resultado falsamente tranquilizador, y entonces el ensayo debe repetirse en fibroblastos de piel.

Diagnóstico de MDS/LMA en pacientes con anemia de Fanconi

Citomorfología

La MDS asociada con AF suele manifestarse con citopenia y displasia multilineal, con o sin exceso de blastos. Un grado leve de diseritropoyesis es muy frecuente en la AF y, por sí solo, no basta para diagnosticar MDS.

La LMA puede aparecer de novo o después de una fase de MDS. Contar los blastos por morfología es esencial para documentar la transformación leucémica.

Inmunofenotipo

La displasia de fondo propia de la AF dificulta distinguir por morfología entre falla medular y MDS. Encontrar patrones aberrantes de expresión antigénica apoya el diagnóstico de MDS.

En la LMA, la citometría de flujo caracteriza la población leucémica y define un inmunofenotipo aberrante asociado con leucemia (LAIP) que sirve para el seguimiento de la enfermedad medible residual (MRD).

Citogenética

Las alteraciones cromosómicas son frecuentes en las MDS y LMA asociadas con AF. A diferencia de la LMA esporádica, aquí muchas de las alteraciones típicas de LMA son poco frecuentes y predominan las ganancias y las pérdidas cromosómicas.

Las alteraciones más características son:

  • +1q, con región mínima 1q23–q32;
  • −7 / del(7q);
  • +3q, con región 3q25–q29 que incluye MECOM/EVI1;
  • con menor frecuencia, del(5q), del(11q), del(13q), del(20q), ganancia 9p y trisomía 8;
  • alteraciones de RUNX1 (21q22) por mutación, deleción o translocación.

Las translocaciones de RUNX1 descritas en la AF por lo general no corresponden a t(8;21)/RUNX1::RUNX1T1, y varios de los genes pareja siguen poco caracterizados.

FISH

El FISH complementa el cariotipo cuando hay alteraciones crípticas, sobre todo ganancias 3q o alteraciones de RUNX1, y con estrategias multicolor ayuda a caracterizar los cambios complejos. Su mayor sensibilidad permite además detectar subclones pequeños.

Mapa citogenético en tres agrupaciones, encabezado por la advertencia de que, a diferencia de la leucemia mieloide aguda esporádica, aquí predominan las ganancias y las pérdidas cromosómicas. Ganancias: más 1q con región mínima 1q23 a q32, y más 3q con región 3q25 a q29, que incluye MECOM EVI1. Pérdidas: menos 7 o deleción 7q, y como conjunto menos frecuente del 5q, del 11q, del 13q, del 20q, ganancia 9p y trisomía 8. Bloque de RUNX1 en 21q22 por mutación, deleción o translocación, con la advertencia de que estas translocaciones por lo general no corresponden a t(8;21) RUNX1::RUNX1T1 y de que varios genes pareja siguen poco caracterizados. Un carril lateral indica que el FISH complementa el cariotipo en alteraciones crípticas, sobre todo ganancias 3q y alteraciones de RUNX1, caracteriza cambios complejos con estrategias multicolor y detecta subclones pequeños.
El patrón citogenético de las MDS y LMA asociadas con anemia de Fanconi no es el de la LMA esporádica: predominan las ganancias y las pérdidas cromosómicas. Las alteraciones características son +1q en 1q23–q32, −7/del(7q), +3q en 3q25–q29 con MECOM/EVI1 y las alteraciones de RUNX1 en 21q22. Las translocaciones de RUNX1 descritas en este contexto por lo general no corresponden a t(8;21)/RUNX1::RUNX1T1. Esquema tipográfico, no un cariotipo real.

Genética molecular

Las mutaciones somáticas son menos frecuentes que en las MDS/LMA esporádicas. RUNX1 y los genes de la vía RAS parecen tener un papel relevante; en casos aislados se han descrito FLT3-ITD y duplicaciones parciales en tándem de KMT2A.

Pronóstico y estadificación medular

Las alteraciones +3q, −7/del(7q) y las de RUNX1 se asocian con MDS/LMA y son hallazgos de alto riesgo. Los cariotipos complejos también se vinculan con un pronóstico desfavorable.

En cambio, +1q puede aparecer de manera temprana y en distintas etapas de la AF, y por sí sola no indica transformación maligna. Del(5q), del(11q) y del(20q) también pueden observarse sin el significado adverso que tienen +3q o −7.

Si se detectan alteraciones sin un significado claramente adverso en un paciente sin citopenia o con citopenia leve, se recomienda vigilancia estrecha con biometría hemática y estudios seriados de médula ósea que incluyan morfología y citogenética.

Un patrón medular de alto riesgo lleva a considerar el trasplante de células progenitoras hematopoyéticas. Como en la AF los agentes que dañan el DNA son muy tóxicos, los esquemas de acondicionamiento suelen requerir intensidad reducida.

La vigilancia a largo plazo es indispensable por el riesgo de neoplasias secundarias y de complicaciones crónicas después del trasplante.

Dos columnas enfrentadas. Columna de alto riesgo: más 3q, menos 7 o deleción 7q, alteraciones de RUNX1 y cariotipo complejo, asociados con MDS y leucemia mieloide aguda; la conducta es considerar el trasplante de células progenitoras hematopoyéticas, con acondicionamiento de intensidad reducida porque los agentes que dañan el DNA son muy tóxicos en la anemia de Fanconi. Columna sin significado claramente adverso: más 1q, del 5q, del 11q y del 20q, con la nota de que más 1q puede aparecer temprano y por sí sola no indica transformación maligna; la conducta, en pacientes sin citopenia o con citopenia leve, es vigilancia estrecha con biometría hemática y estudios seriados de médula ósea con morfología y citogenética. Franja final con el riesgo acumulado hacia los 40 años: falla medular de 50 a 90%, MDS cercano a 30% y leucemia mieloide aguda cercana a 10%, y la nota de vigilancia a largo plazo por neoplasias secundarias y complicaciones crónicas después del trasplante.
No toda alteración clonal en la anemia de Fanconi significa transformación. Las de +3q, −7/del(7q) y RUNX1, junto con el cariotipo complejo, configuran un patrón medular de alto riesgo que lleva a considerar el trasplante, siempre con acondicionamiento de intensidad reducida por la toxicidad de los agentes que dañan el DNA. En cambio, +1q puede aparecer de manera temprana y por sí sola no indica transformación: ahí corresponde vigilancia estrecha con estudios seriados.

Referencias y recursos seleccionados

  1. Frohnmayer D et al. Fanconi Anemia Clinical Care Guidelines. Fifth Edition. Fanconi Anemia Research Fund, 2020.
  2. Peffault de Latour R, Soulier J. How I treat MDS and AML in Fanconi anemia. Blood 2016;127(24):2971-2979.
  3. Quentin S et al. Myelodysplasia and leukemia of Fanconi anemia are associated with a specific pattern of genomic abnormalities that includes cryptic RUNX1/AML1 lesions. Blood 2011;117(15):e161-e170.
  4. Tönnies H et al. Clonal chromosomal aberrations in bone marrow cells of Fanconi anemia patients: gains of the chromosomal segment 3q26q29 as an adverse risk factor. Blood 2003;101(10):3872-3874.
  5. WHO Classification of Tumours Editorial Board. Haematolymphoid tumours. WHO Classification of Tumours, 5th ed., vol. 11, 2022.

Última actualización de la fuente: diciembre de 2025.